Ｑ．培養した細胞塊（スフェロイド）の回収はどのようにすればよいですか？
 
Ａ．ピペットで培養液ごと強めに吸い取っていただくか、
　　またはピンセットでTASCLをカルチャーインサートからはがし、
　　培養液で細胞塊を洗い流すようにして、培養液ごと回収します。
 
 
 
Q．TASCLはどのような種類の細胞の三次元培養に用いることができますか？
 
A．再生医療の研究で一般的に用いる細胞であれば、
　　種類を問わず培養できます。
　　一例として下記の細胞については実績があります。
　　・ hiPS細胞（複数株）
　　・ hiPS由来心筋細胞（正常、疾患） 
　　・ HepG2細胞
　　・ MIN6細胞
　　・ ヒト由来幹細胞
　　・ ヒト膝軟骨細胞
　　・ マウスES細胞（複数株）
　　・ マウス初代肝細胞
　　・ マウス初代心筋細胞
 
 
 
Ｑ．TASCL上の細胞塊を顕微鏡で観察できますか？
 
Ａ．TASCLマイクロウェル、6穴プレート、カルチャーインサートは
　　光学的に透明ですので、倒立顕微鏡でそのまま観察していただけます。
　　対物レンズとの作動距離を3mm程度確保する必要があるため、
　　一般的な倒立顕微鏡の対物レンズの4倍～20倍であれば
　　TASCLのままで観察していただけます。
 
 
 
Ｑ．TASCL上の細胞塊を蛍光染色はできますか？
　　染色はどのようにすればよいですか？
 
Ａ．蛍光染色できます。
　　各種染色試薬のマニュアル通りのプロトコルで結構ですが
　　注意事項として下記の点がございます。
 
　　TASCL上での各種染色をする際の注意点は、
　　常に試薬がカルチャーインサートの上から下（表から裏）に
　　流れるように操作することです。
 
　　一つの簡易的な方法は、TASCL/カルチャーインサートを
　　ウェルプレートから取り出し、滅菌したドレープなどの上において
　　TASCL内の液体を目的の試薬と置換していくことです。
 
　　液面が常にTASCLの上面を超えない程度に、滴下速度を調整します。
　　固定や染色等、試薬を入れたまま待ち時間が必要な場合は、
　　カルチャーインサートをドレープから離して、
　　宙に浮いた状態にしておけば、表面張力で液体は保持されます。
 
　　量子ドット、あるいはその他のライブイメージング用蛍光試薬を
　　播種前、あるいはEB培養中の培地に添加しておくのも良いです。
 
　　2次元培養で使用している免染や特殊染色をTASCL上で行うことも
　　可能です。
 
　　なお、細胞塊を球体のまま染めても、定量的染色はできません。
　　染まり具合の比較など、定量的議論が必要な際は、
　　やはり固定して切片にしてから染色すべきです。
　　その際には、細胞塊包埋用ゲルを用いると便利です。
 
 
 
Q．タスクルで培養した細胞と、2次元培地で培養した細胞でELISA試験を
　　行いたいのですが、2次元培地と比較して手技的な違いはありますか？
 
A．特に手技の違いはありません。
 
 
 
Ｑ．TASCL1000ウェルとTASCL600ウェルはどのような用途を想定していますか？
 
Ａ．TASCL1000ウェルは、
　　ウェルあたりの培養細胞数の目安は500個～3,000個で、
　　再生医療の研究における各種細胞の三次元培養・分化誘導に
　　用いることを想定しています。
 
　　TASCL600ウェルは、
　　1ウェルあたりの培養細胞数の目安は2,000個～10,000個で、
　　TASCL1000ウェルよりも大きな細胞塊が培養できるため、
　　三次元スフェロイドやオルガノイドの形成に向いています。
 
  
 
Ｑ．TASCLの滅菌はどのようにしていますか？
 
Ａ．ガンマ線滅菌です。
 
 
Ｑ．細胞混濁液の播種量の目安はどの程度ですか。
　　また、播種時の注意事項はありますか。
 
Ａ．細胞懸濁液の量は500uLを標準として、多少上下しても問題ありません。
　　その他注意事項としては、インサートの内側に細胞懸濁液（500uL）を
　　播種した後、細胞が沈降するのを待ってから、
　　インサートの外側（ウェル部分）に液面がTASCLの上面と
　　同じくらいになる程度に培地を追加するということです。"
 
 
 
Ｑ．細胞塊をTASCLからはがすときにうまく行える方法など
　　ありますでしょうか。
 
Ａ．次の方法があります。

　a) 細胞塊がTASCL側に接着している場合
　　TASCLをピンセット等で把持してインサートから剥がし、
　　緩衝液などが入った６ウェルプレートや遠沈管の中で
　　ピペットの水流により落とします。
 
　b) 細胞塊がインサート膜側に接着している場合
　　TASCLをピンセット等で把持してインサートから剥がし、
　　インサート表面に残っている細胞塊をスクレーパーなどで
　　こすり落とします。
 
 
 
Ｑ．三日月形状の窪み部分は何に使いますか？
　　また、細胞懸濁液を播種時にこの穴に細胞が入り、
　　不純物となって、マイクロウェルに混入することはありませんか？
 
Ａ．この窪みは、細胞懸濁液を滴下した後、培養液を追加注入したり、
　　吸引したりするための窪みです。
　　細胞懸濁液を滴下した後、培養液をマイクロウェルの上から
　　注入・吸引すると、マイクロウェルから細胞が出てしまう
　　恐れがありますので、この窪みで培養液の量を調整します。
 
　　この窪みとマイクロウェルの間は壁で仕切られているため、
　　窪みに不純物が残ったとしても、水平に保たれていれば、
　　マイクロウェル側に流れることはありません。
 
 
 
Ｑ．細胞塊は上段のカルチャーインサートのメンブレン（浸透膜）上に
　　ありますが、細胞塊から出たタンパク質や酵素などは
　　下段まで通過しますか？
 
Ａ．タンパク質分子のサイズは～10nm程度、
　　酵素のサイズは～20nm程度ですので、
　　カルチャーインサート（PETメンブレンのポアサイズ　3.0μm）を
　　通過します。
 
 
 
Ｑ．細胞塊がカルチャーインサートのメンブレン上にできますが、
　　細胞塊にならなかった細胞はどうなりますか？
 
Ａ．細胞塊形成が上手く行っていれば、細胞塊にならなかった周りの
　　小さな細胞の数は、細胞塊を構成する細胞数に対して
　　数%になると思います。一般的な実験であれば無視できるレベルです。
 
　　それが無視できないレベルの、微小な差を検出する実験系の場合は、
　　細胞塊形成後に、別容器に取り出して解析していただければと存じます。
 
 
 
Q．TASCLの構成・サイズ、マイクロウェルのサイズも教えて下さい。 
 
A．次の通りです。

　①TASCL 600ウェル
　　6穴プレート1個に、TASCL6個、カルチャーインサート6個。
　　マイクロウェル：上部650μm×650μm。底部400μm×400μm。
　　　　　　　　　　高さ500μm。マイクロウェル数1,020。
　　おおよそ150μｍ～200μmの細胞塊培養に適している。
 
　②TASCL 1,000ウェル
　　6穴プレート1個に、TASCL6個、カルチャーインサート6個。
　　マイクロウェル：上部500μ,×500μm。底部250μm×250μm。
　　　　　　　　　　高さ500μm。マイクロウェル数621。
　　おおよそ200μm～300μｍの細胞塊培養に適している。
  
 
Ｑ．TASCLの購入方法（最低購入数も）・支払い方法を教えて下さい。
 
Ａ．TASCLを購入されたい時には、弊社お問合せ先へご連絡ください。
　　最低購入数は、600ウェル、1,000ウェル共に1セット
　　（6穴・6カルチャーインサート・TASCL/1セット）です。
　　お支払い方法は、担当の販売代理店様、あるいは、弊社より
　　お知らせいたします。
 
 
Ｑ．TASCLを注文しましたら、どのくらいで手元に届きますか。
 
Ａ．販売代理店へ注文される場合は、当該販売代理店様へご確認ください。
　　弊社からはご注文から1週間以内に発送します（日本国内の場合）。
 
　　弊社から直接購入していただく場合は、
　　ご注文から1週間以内にお手元に届くよう発送します（日本国内の場合）。
　　在庫が不足する場合は、改めてご連絡を差し上げます。
 
  
 
Ｑ．TASCLの有効期限を教えて下さい。
 
Ａ．TASCLの有効期限は、製造日から起算して1年間です。
　　これはタンパク質防付着処理のコーティングの期限が2年間ですが、
　　ガンマ線滅菌により劣化があることを想定して1年間に短縮しています。
 
　　なお、1年間が経過したことで顕著な違いが生じることは
　　現時点では確認してはおりません。
 
 
 
Ｑ．他社の細胞培養マイクロプレートや三次元培養用器材と比較して、
　　TASCLのメリットを教えてください。
 
Ａ．TASCLは、マイクロウェルの底部が貫通していることから、
　　次のメリットがあります。
 
　　1) 細胞懸濁液を上から滴下するだけで、大きさ・形状・品質が均一な
　　　細胞塊を一度に「約3600個（600ウェルの場合）」または
　　　「約6000個（1000ウェルの場合）」培養できます。
　　　細胞懸濁液に遠心分離は不要です。
 
　　2）使い方が簡単で、細胞培養初心者でも、
　　　 大きさ・形状・品質が均一な細胞塊を容易に培養することができる。
 
　　3) TASCLの底面が多孔質のため、ガスや培地が循環する。
　　　そのため、1ヶ月以上の長期培養ができ、分化誘導も可能。
 
　　4) TASCLはピンセットで引っ張ればカルチャーインサートから
　　　 剥がせるため、任意の培養器材と組み合わせて使用できる。
 
　　5) ウェルの深さが、細胞塊の直径以上に深いため、
　　　培養液交換の際の細胞化のロスがほとんど発生しない。
　　　（細胞塊の流出が防止される）。
 
　　6）1.65cmに約600個または約1000個のウェルのため、
　　　  密度が高く培地や試薬のコスト削減に繋がる。
 
　　7）滅菌およびタンパク質防付着コーティングがされており、
　　　  開封してすぐに使用できる。
　　　  ただし気泡が多く発生していたら、気泡除去を行う必要があります。
 
　　8) TASCLに載せたまま細胞塊を顕微鏡で観察できる。
　　　TASCL、カルチャーインサート、6穴プレートは
　　　光学的に透明であるため、TASCLを載せたまま細胞を顕微鏡観察
　　　することができる。
 
 
 
Ｑ．TASCLで培養した細胞塊を、人に投与してもよいでしょうか。
 
Ａ．現状、TASCLは試験研究用として販売しておりますので、
　　TASCLで培養した細胞塊をヒトに投与することは、
　　臨床研究の例外を除き認められていません。
 
　　なお、例外として、再生医療等安全性確保法のもと、
　　所定の手続きを経て、TASCLで培養した細胞塊をヒトに投与する
　　臨床研究を行っている例もあります。
　　臨床研究についてはお問い合わせください。

学会発表

弊社役職員が参加したTASCL、三次元培養、細胞塊、細胞培養・細胞加工技術や細胞移植に関する学会発表の成果です。

• 「新規再生医療デバイス TASCL（タスクル）を用いた細胞塊治療　―基礎から臨床へ―」　発表学会：2019/3/23　第18回日本再生医療学会総会 共催学術セミナー
• 「独自開発した胚葉体培養デバイスTASCLを用いた幹細胞クラスター長期培養法と分化誘導法の開発」　発表学会：2018/3/21-23　第17回日本再生医療学会総会（パシフィコ横浜）
• 「胚様体大量培養デバイス TASCL（Tapered Stencil for Cluster Culture）を用いた幹細胞クラスター長期培養法」　発表学会：2017/11/10　第44回 日本臓器保存 生物医学会 学会集会（大阪大学中之島センター）
• 「３次元培養デバイスTASCLを用いた胚様体形成プロセスの評価」　発表学会：2017/3/7-9　第16回日本再生医療学会（仙台）
• 「胚様体大量培養デバイスTASCLを用いた幹細胞クラスターの長期間培養法の検討」　発表学会：2017/3/7-9　第16回日本再生医療学会（仙台）
• 「胚様体大量生産のための新規エラストマー培養アレイの開発」　研究者：池内真志、木部龍太、豊田悠司、生田幸士、林衆治　発表学会　2013/3/21-23　第12回日本再生医療学会総会（横浜）
• 「細胞への多糖磁性粒子複合体の付着・取り込みとTEM評価解析」　研究者：宮本義孝、斉藤弘明、野口洋文、村瀬勝俊、林　衆治　発表学会：2012/11/16-17　第39回日本臓器保存生物医学会学術集会（福島）
• 「細胞パターニングデバイスによる初代肝細胞スフェロイドの構築」　研究者：宮本義孝、池内真志、湯川博、鈴木聡、岩田久、生田幸士、林　衆治　発表学会：2011/3/1-2　第10回日本再生医療学会総会（東京）
• 「Quantum dots based imaging of adipose-derived stem cells for srem cell therapy.」
  　研究者：Wartanabe M, Yukawa H, Kagami Y, Kaji N, Okamoto Y, Miyamoto Y, Tokeshi M, Hayashi S, Baba Y　発表学会：2010/12/15-20　2010 International Chemical Congress of Pacific Basin Societies (PACIFICHEM 2010),
• 「膵島再生に向けたコンビナトリアル３次元培養デバイスの開発」　研究者：池内真志、大石幸一、野口洋文、宮本義孝、林　衆治、生田幸士　発表学会：2010/11/19-20　第37回日本臓器保存生物医学会（新潟）

研究論文

弊社役職員が参加したTASCL、三次元培養、細胞塊、細胞培養・細胞加工技術や細胞移植や細胞移植に関する研究成果です。

• 宮本 義孝, 池内 真志, 河野 菜摘子「二次元培養から三次元培養への潮流～細胞培養技術の変遷～」Organ Biology 27(1), 37-52, 2019　一般社団法人　日本臓器保存生物医学会　https://doi.org/10.11378/organbio.27.37
• Yoshitaka Miyamoto, Masashi Ikeuchi, Hirofumi Noguchi, Tohru Yagi, and Shuji Hayashi, Cell Medicine, Vol. 8, pp. 4756, 2015, "Spheroid Formation and Evaluation of Hepatic Cells in a Three-Dimensional Culture Device"
• http://dx.doi.org/10.3727/215517915X689056
• 宮本 義孝, 池内 真志, 野口 洋文, 鈴木 聡, 八木 透, 生田 幸士, 林 衆治「培養デバイスTASCLによる初代肝細胞スフェロイド培養、および均一・大量生産系の確立」生体医工学/53 巻 (2015) Supplement号、https://doi.org/10.11239/jsmbe.53.S230_02
• 池内 真志, 豊田 悠司, 林 衆治, 生田 幸士、「気液透過性を付与したTASCLによるhiPS胚様体の高効率生産」生体医工学/53 巻 (2015) Supplement 号　https://doi.org/10.11239/jsmbe.53.S236_01
• Yoshitaka Miyamoto, Masashi Ikeuchi, Hirofumi Noguchi, Tohru Yagi, Shuji Hayashi, "Three-Dimensional In Vitro Hepatic Constructs Formed Using Combinatorial Tapered Stencil for Cluster Culture (TASCL) Device", Cell Med, 2014 Dec 12;7(2):67-74. doi: 10.3727/215517914X685187.
• Oishi K, Miyamoto Y, Saito H, Murase K, Ono K, Sawada M, Watanabe M, Noguchi Y, Fujiwara T, Hayashi S, Noguchi H. In vivo imaging of transplanted islets labeled with a novel cationic nanoparticle. PLoS One. 2013;8(2):e57046. 2013
• Sugimoto M, Watanabe M, Haku H, Li SA, Noguchi H, Ueki H, Sakaguchi M, Huh NH, Nasu Y, Kumon H. Preclinical biodistribution and safety study of reduced expression in immortalized cells/Dickkopf-3-encoding adenoviral vector for prostate cancer gene therapy. Oncol. Rep. 28(5), 1645-1652. 2012
• Ueki H, Wakanabe M, Haku H, Huang P, Li SA, Ochiai K, Hirata T, Noguchi H, Yamada H, Takei K, Nasu Y, Kashiwakura Y, Kumon H.Int. J. A novel gene expression system for detecting viable bladder cancer cells. Oncol. 41(1), 135-140. 2012
• Yukawa H, Watanabe M, Kaji N, Okamoto Y, Tokeshi M, Miyamoto Y, Noguchi H, Baba Y, Hayashi S. Monitoring transplanted adipose tissue-derived stem cells combined with heparin in the liver by fluorescence imaging using quantum dots. Biomaterials 33(7), 2177-2186. 2012
• Miyamoto Y, Oishi K, Yukawa H, Noguchi H, Sasaki M, Iwata H, Hayashi S.　Cryopreservation of human adipose tissue-derived stem/progenitor cells using the silk protein sericin. Cell Transplant. 21(2-3), 617-622. 2012
• Hayashi T, Misawa H, Nakahara H, Noguchi H, Yoshida A, Kobayashi N, Tanaka M, Ozaki T. Transplantation of osteogenically differentiated mouse iPS cells for bone repair. Cell Transplant. 21(2-3), 591-600. 2012
• Naziruddin B, Matsumoto S, Noguchi H, Takita M, Shimoda M, Fujita Y, Chujo D, Tate C, Onaca N, Lamont J, Kobayashi N, Levy MF. Improved pancreatic islet isolation outcome in autologous transplantation for chronic pancreatitis. Cell Transplant. 21(2-3), 553-558. 2012
• Takita M, Matsumoto S, Noguchi H, Shimoda M, Ikemoto T, Chujo D, Tamura Y, Olsen GS, Naziruddin B, Purcell K, Onaca N, Levy MF. Adverse events in clinical islet transplantation: one institutional experience. Cell Transplant. 21(2-3), 547-551. 2012
• Noguchi H, Naziruddin B, Jackson A, Shimoda M, Ikemoto T, Fujita Y, Chujo D, Takita M, Peng H, Sugimoto K, Itoh T, Kobayashi N, Onaca N, Levy MF, Matsumoto S. Fresh islets are more effective for islet transplantation than cultured islets. Cell Tranaplant. 21(2-3), 517-523. 2012
• Noguchi H, Naziruddin B, Jackson A, Shimoda M, Fujita Y, Chujo D, Takita M, Peng H, Sugimoto K, Itoh T, Kobayashi N, Ueda M, Okitsu T, Iwanaga Y, Nagata H, Liu X, Kamiya H, Onaca N, Levy MF, Matsumoto S. Comparison of ulinastatin, gabexate mesilate, and nafamostat mesilate in preservation solution for islet isolation. Cell Transplant. 21(2-3), 509-516. 2012
• Shimoda M, Noguchi H, Fujita Y, Takita M, Ikemoto T, Chujo D, Naziruddin B, Levy MF, Kobayashi N, Grayburn PA, Matsumoto S. Islet purification method using large bottles effectively achieves high islet yield from pig pancreas. Cell Transplant. 21(2-3), 501-508. 2012
• Noguchi H, Naziruddin B, Shimoda M, Fujita Y, Chujo D, Takita M, Peng H, Sugimoto K, Itoh T, Kobayashi N, Onaca N, Levy MF, Matsumoto S. Evaluation of osmolality of density gradient for human islet purification. Cell Transplant. 21(2-3), 493-500. 2012
• Shimoda M, Noguchi H, Fujita Y, Takita M, Ikemoto T, Chujo D, Naziruddin B, Levy MF, Kobayashi N, Grayburn PA, Matsumoto S. Improvement of porcine islet isolation by inhibition of trypsin activity during pancreas preservation and digestion using α1-antitrypsin. Cell Transplant. 21(2-3), 465-471. 2012
• Takita M, Matsumoto S, Qin H, Noguchi H, Shimoda M, Chujo D, Itoh T, Sugimoto K, Onaca N, Naziruddin B, Levy MF. Secretory unit of islet transplant objects (SUITO) index can predict severity of hypoglycemic episodes in clinical islet cell transplantation. Cell Transplant. 21(1), 91-98. 2012
• Takasaki Y, Watanabe M, Yukawa H, Sabarudin A, Inagaki K, Kaji N, Okamoto Y, Tokeshi M, Miyamoto Y, Noguchi H, Umemura T, Hayashi S, Baba Y, Haraguchi H.
• Estimation of the distribution of intravenously injected adipose tissue-derived stem cells labeled with quantum dots in mice organ through the determination of their metallic components by ICPMS. Anal. Chem. 83(21), 8252-8258. 2011
• Noguchi H. Pancreas procurement and preservation for islet transplantation: personal considerations. J. Transplant. 2011, 783168
• Ochiai K, Watanabe M, Ueki H, Huang P, Fujii Y, Nasu Y, Noguchi H, Hirata T, Sakaguchi M, Huh NH, Kashiwakura Y, Kaku H, Kumon H. Tumor suppressor REIC/Dkk-3 interacts with the dynein light chain, Tctex-1. Biochem. Biophys. Res. Commun. 412(2), 391-395. 2011
• Takita M, Matsumoto S, Noguchi H, Shimoda M, Chujo D, Itoh T, Sugimoto K, Sorelle JA, Onaca N, Naziruddin B, Levy MF. Cluster analysis of self-monitoring blood glucose assessments in clinical islet cell transplantation for type 1 diabetes. Diabetes Care 34(8), 1799-1803. 2011
• Yukawa H, Noguchi H, Hayashi S. Embryonic body formation using the tapered soft stencil for cluster culture device. Biomaterials 32(15), 3729-3738. 2011
• Yukawa H., Kagami Y., Watanabe M., Oishi K., Miyamoto Y., Okamoto Y., Tokeshi M., Kaji N., Noguchi H., Ono K., Sawada M., Baba Y., Hamajima N., Hayashi S. Quantum dots labeling using octa-arginine peptides for imaging of adipose tissue-derived stem cells. Biomaterials 31(14), 4094-4103. 2010
• Yukawa H., Ikeuchi S., Noguchi H., Miyamoto Y.,Ikuta k., Hayashi S. "Embryonic Body Formation Using The Tapered Soft Stencil For Cluster Culture Device. ″　Biomaterials, 32, 3729-3738.
• Yukawa H., Noguchi H., Oishi K., Takagi S., Miyamoto Y., Hayashi S. Cell Transplantation of Adipose Tissue-Derived Stem Cells in Combination with Heparin Attenuated Acute Liver Failure in Mice. Cell Transplant. 18(5-6), 611-618. 2009

特許

TASCL関連の特許取得および出願状況は次の通りです。
 
１．任意の分布形状と分布密度を有する分子または粒子の集団を同時に多種大量生成する方法とその方法に使用するマスク材（特許取得済み）
　　出願番号：特願2008-237696(P2008-237696)
　　出願日：2008年9月17日
　　公開番号：特開2010-68728(P2010-68728A)
　　国際公開番号：WO 2010/032595 A1
　　出願人：独立行政法人科学技術振興機構
　　発明者：生田幸士、池内真志
 
２．細胞培養用シートおよびその製造方法（審査請求中） 
　　出願番号：特願2014-123483(P2014-123483)
　　出願日：2014年6月16日
　　出願人：日東電工株式会社,池内真志,一般財団法人グローバルヘルスケア財団
　　発明者：豊田悠司、池内真志、林衆治
 
３．細胞培養装置および細胞培養方法（審査請求中）
　　出願番号：特願2014-232224(P2014-232224)
　　出願日：2014年11月14日
　　出願人：池内真志
　　発明者：池内真志、林衆治、豊田悠司